Часть рабочего стола (50-80 см) покрывают тремя слоями марли увлажненной 5% раствором хлорамина. На этой части стола не должно быть никаких предметов, кроме материалов, подлежащих исследованию (мыши для вскрытия, взвесь мозга и т.п.).
9.6.6. После окончания работы марлю, которой покрывали рабочее место, опускают в банку с дезраствором, стол дезинфицируют 5% раствором хлорамина, или 4% раствором гидроксида натрия.
9.6.7. Растирание и эмульгирование органов и тканей, содержащих вирус, проводят в ступке с глухим чехлом из 4-х слоев марли или в банке с бусами и притертой пробкой, обернутой чехлом из 4-х слоев марли, пропитанной 5% раствором хлорамина.
9.6.8. Каждый работник отдела во время работы должен пользоваться колпаком и двумя халатами, которые имеют застежку сзади и два кармана спереди. Один халат служит для постоянной работы, другой одевают сверху первого только для работы в боксе. Халаты меняют по мере необходимости, но не реже 1-го раза в три дня. Использованные халаты складывают в металлические коробки и до стирки обеззараживают в автоклаве. Халат и колпаки должны иметь метки о закреплении их за данным подразделением.
9.6.9. Все работы необходимо проводить в марлевой маске (4 слоя марли на нос и рот) и в защитных очках, которые защищают работников от капельной инфекции.
В течение дня работники меняют стерильные марлевые маски по мере необходимости (переход из одного бокса в другой, изменение исследуемого материала, механическое загрязнение и т.п.). Снятые маски стерилизуют в автоклаве.
9.6.10. Во время работы резиновые перчатки, по мере их загрязнения, обеззараживают, опуская руки в перчатках в банку с 5% раствором хлорамина.
9.6.11. По окончании работы руки в перчатках промывают в банке с 5% раствором хлорамина, после чего перчатки снимают и обеззараживают повторно, опуская их на 30 минут в другую банку с таким же раствором и потом кипятят.
9.6.12. Очки дезинфицируют 70% этанолом и хранят на столе в чистой банке. Очки, как и маски, снимают только после обеззараживания рук дезраствором.
9.6.13. При использовании пипеток (градуированных или пастеровских) в них необходимо вкладывать двойные ватные пробки на расстоянии 1 см одна от другой. Пипетирование проводят при помощи резинового баллона.
9.6.14. При заражении лабораторных животных и вскрытии трупов погибших лабораторных животных, зараженных возбудителями вирусных заболеваний, необходимо соблюдать требования безопасности, изложенные в пунктах 9.6.15 - 9.6.20 этих Правил.
9.6.15. Вскрытие или заражение мелких животных проводить в защитных стеклянных настольных боксах, соблюдая правила асептики и предупреждения возможного разбрызгивания инфекционного материала;
- интраназальное заражение животных проводят только наркотированным животным;
- работу с куриными эмбрионами и культурами клеток проводят только в боксах.
9.6.16. Погибших мышей берут корнцангами, вскрывают их на пробковой доске площадью не менее 18 см2, покрытой несколькими слоями марли, увлажненной 5% раствором хлорамина, или в чашках Петри.
9.6.17. Для извлечения мозга мышей закрепляют на пробковой доске булавками спиной вверх. Кожу в области головы протирают 5% раствором хлорамина, снимают кожу с головы, делают разрез черепа острыми глазными ножницами.
9.6.18. Мышей после вскрытия кладут в бачок с дезраствором. Пробковую доску и марлю после окончания работы погружают в 5% раствор хлорамина на 2 часа или же кипятят в течение 1-го часа.
9.6.19. Инструмент для вскрытия стерилизуют кипячением, перед применением его прокаливают над пламенем спиртовки. При работе с одним и тем же животным его периодически протирают тампонами, смоченными водой, после чего погружают в спирт и опаливают.
9.6.20. После использования инструмент (пинцет, ножницы, булавки и т.п.) необходимо немедленно обеззаразить кипячением.
9.6.21. Предметы, которые выносят из бокса, в том числе и клетки с мышами, протирают снаружи марлей, смоченной 5% раствором хлорамина. Марлю после использования погружают в сосуд с таким же раствором. Запрещается выносить за пределы помещения грязную посуду без обеззараживания.
9.6.22. При ведении работ с вирусом бешенства врач ветмедицины должен иметь помощника (лаборанта), которого допускают к работе при условии приобретения им практического опыта и сдачи специального зачета (теоретические знания по технике безопасности и освоения методик заражения и вскрытия мышей, приготовления и разбавления суспензии и т.п.).
9.6.23. Центрифугу для работы с рикетсиозным или вирусным материалом устанавливают в предбокснике. Жидкость разливают в стаканы или центрифужные пробирки с тугоплавкого стекла, плексигласу или металла и обязательно закрывают пробками или завинчивают крышками.
9.6.24. При работе с материалом, который может содержать прионы, необходимо:
- надевать защитный костюм типа І;
- обеззараживание патматериала проводить автоклавированнием в течение 1 часа при давлении в 0,2 МПа (2 атм.);
- с химических дезинфицирующих средств использовать гипохлорид натрия (20% раствор, экспозиция 1 час) или 1Н-2Н (4-8%) раствор гидроксида натрия (экспозиция не менее одного часа);
- обеззараживание инструментария и других предметов необходимо проводить заливкой их 20% раствором гипохлорида натрия или 1Н-2Н раствором гидроксида натрия оставляя при температуре 20° С на ночь.
9.7. Работа в серологическом отделе
9.7.1. Материал, который поступил в отдел на исследование, необходимо хранить в холодильнике. Не допускается оставлять его в коридоре или других местах, доступных для посторонних лиц.
9.7.2. В лаборатории кровь и биологические жидкости должны считаться потенциально инфицированными материалами.
9.7.3. Мытье посуды после предварительной дезинфекции необходимо проводить в резиновых перчатках.
9.7.4. В случае попадания крови, сыворотки или культуры лептоспир на кожу необходимо обработать ее тампоном, смоченным 70% этанолом, в течение 2 минут.
Если кровь или культура попали на слизистые оболочки, их обрабатывают струей воды, а потом одним из приведенных растворов: 1% раствором борной кислоты, 1% раствором протаргола, а полость рта и горло обрабатывают 70% этанолом, 1% раствором борной кислоты или 0,05% раствором перманганата калия.
9.7.5. Не допускается насасывать материал в пипетки ртом. Для этого необходимо пользоваться автоматическими пипетками, а в случае их отсутствия - резиновыми грушами, индивидуальными пипетками Флоринского. Компоненты необходимо разливать аппаратом Флоринского, шприц-автоматом или другими устройствами.
9.7.6. После окончания работы со столов убирают все лишнее и протирают их 5% раствором хлорамина или фламбируют.
9.7.7. Отработанные пробы крови засыпают хлорной известью или заливают 10% раствором гидроксида натрия, нейтральным гипохлоридом кальция в соотношении 200 гр. на 1 литр, перемешивают и выдерживают 60 минут.
9.7.8. Промытые пробирки, после предварительной их дезинфекции, кипятят 30 минут в закрытой посуде в 0,5% растворе моющих средств или в 2% растворе гидрокарбоната натрия в течение 15 минут.
После учета реакции пробирки заливают раствором моющего средства, кипятят в течение 10-15 минут, после чего их моют.
9.7.9. Отработанное предметное стекло выдерживают несколько дней в хромовой смеси, промывают в проточной воде, вытирают чистой ветошью.
Чистые стекла сохраняют в смеси спирта и эфира в соотношении 1:1 в банке с притертой пробкой.
9.7.10. С дезрастворов применяют: 10% раствор гидроксида натрия, 3% раствор хлорамина, 6% переоксид водорода с 0,6% моющих средств (Лотос, Астра, Прогресс), 4% раствор формальдегида, 0.5% нейтральный гипохлорид кальция. Время обеззараживания 60 минут.
Дезинфицирующие растворы используют только один раз.
9.7.11. Посуда для проведения дезинфекции должна быть четко обозначена и иметь крышки.
9.7.12. Обработка посуды, агглютинативных пластин, стекол при работе с культурами лептоспир проводится согласно с Наставлением к лабораторной диагностике лептоспироза.
Пересев штаммов лептоспир необходимо проводить в боксе.
9.7.13. Ватные пробки от пробирок с кровью сжигают или собирают в бачки и стерилизуют автоклавированием.
9.7.14. Для доставки в лабораторию проб кожсырья используют тару, которая соответствует за своими габаритами внутреннему объему автоклава. Пробы немедленно стерилизуют и только тогда пускают в работу.
9.7.15. Перекладывать пробы в автоклав или в иную тару и автоклавировать их разрешается с соблюдением следующих правил:
- при работе с неавтоклавированным сырьем необходимо обувать резиновые сапоги, надевать дополнительный халат, резиновый фартук и перчатки.
- перекладывать неавтоклавированные пробы необходимо только на клейонке, которую после окончания работы необходимо простерилизовать в автоклаве.
- тару, в которой доставляли пробы, автоклавируют, а металлическую посуду опаливают факелом или паяльной лампой.
- по окончании работы резиновую спецодежду необходимо протереть дезраствором, халат проавтоклавировать, перчатки прокипятить.
9.8. Диагностика микозов и микотоксикозов
9.8.1. При проведении микологических исследований необходимо выполнять требования охраны труда, предусмотренные для бактериологической диагностики.
9.8.2. Для предупреждения заражения помещений лаборатории спорами грибов посевы с патматериала и кормов необходимо проводить в боксе с соблюдением правил безопасности, изложенных в подразделе 9.2 этих Правил.
9.8.3. Экстракцию кормов, выпаривание экстрактов и хроматографию необходимо проводить в вытяжном шкафу при включенной вентиляции. При этом не допускается использовать открытое пламя и электроплиты с открытой спиралью.
9.8.4. Трупы лабораторных животных, которые использовали для биологических исследований, уничтожают путем сжигания.
9.8.5. Культуры грибов и зараженный ими материал необходимо автоклавировать, по возможности, в день окончания исследований.
9.8.6. Предметные и покровные стекла, пипетки, бывшие в использовании, вначале обеззараживают 5% раствором хлорамина, а потом вместе с использованными чашками Петри автоклавируют под давлением в 0,15 МПа (1,5 атм.) в течение 2 часов.
9.8.7. Микотоксины хранят в сейфе или в отдельном, закрытом на замок шкафу.
9.8.8. Остатки неиспользованных кормов, из которых при исследовании были выделены токсичные или патогенные грибы, через 1 месяц после выдачи экспертизы уничтожают сжиганием.
9.8. 9. При работе с исследуемым материалом руки обрабатывают 70% этанолом.
9.8.10. В конце рабочего дня в рабочих помещениях проводят влажную уборку с использованием 5% раствора хлорамина.
9.9. Работа в паразитологическом отделе
9.9.1. Работу с заразным материалом проводят исключительно в боксе. Препараты, которые подготовлены на исследование, должны быть размещены на специальных подносах (эмалированных или изготовленных из материала, который легко обеззараживается). После исследования материал автоклавируют или сжигают. Предметные и покровные стекла, пастеровские пипетки и иная стеклянная посуда, кюветы, подносы обеззараживают дезинфицирующими препаратами.
9.9.2. Штаммы патогенных культур (токсоплазмы, трихомонады), личинки гельминтов (финны, трихинеллы и т.п.) и членистоногие должны быть на учете и регистрироваться в журнале учета выделенных культур и их уничтожения (приложение 2).
9.9.3. В случаях рассеивания заразного материала срочно принимают меры по обеззараживанию места, где произошла авария.
9.9.4. При работе с материалом, который может обуславливать появление аллергических процессов (аллергенные клещи и др.), необходимо принимать меры для защиты дыхательных путей (работать в марлевой маске, работу выполнять в настольном боксе).
9.9.5. При работе в паразитологическом отделе необходимо придерживаться такого же противоэпидемического режима, как и при работе в бактериологическом отделе (изложенного в подразделе 9.5 этих Правил).
9.10. Работа в химико-токсикологическом отделе
9.10.1. Работу с горючими и ядовитыми веществами необходимо проводить только в вытяжном шкафу.
9.10.2. Для проведения работ с взрыво- и огнеопасными веществами их берут в минимальном количестве. Общий запас таких веществ в производственных помещениях не должен превышать дневной потребности, а на рабочих местах - в количестве, которое необходимо для выполнения определенной операции.
9.10.3. Нагрев легковоспламеняющихся веществ (эфир, бензин, бензол, ацетон, спирт и др.) проводят в вытяжном шкафу на песочной (или водяной) бане с закрытым электронагревателем. Не разрешается пользоваться открытым пламенем и опускать колбу с легковоспламеняющейся жидкостью в горячую воду без предварительного постепенного подогрева.
При перегонке легковоспламеняющихся жидкостей в холодильник сначала пускают холодную воду, а потом включают нагрев бани.
9.10.4. Отработанные горючие жидкости собирают в специальную герметическую тару и передают для регенерации или уничтожения. Слив их в канализацию не допускается.
9.10.5. При приготовлении рабочих растворов, навесок химических веществ, которые вызывают поражение кожи или проникают через нее, а также при работе с веществами, сведения о действии которых на кожу отсутствуют, необходимо пользоваться резиновыми перчатками.
9.10.6. На стаканы с реактивами наклеивают этикетки с названиями веществ.
9.10.7. При работе с концентрированными кислотами, щелочами и органическими растворителями необходимо соблюдать такие меры безопасности:
- все работы проводить у вытяжном шкафу;
- надевать очки, резиновые перчатки, нарукавники и резиновый фартук;
- концентрированную кислоту отбирать из сосуда только при помощи специальной пипетки с грушей, сифоном или мерным цилиндром;
- при приготовлении растворов кислот в сосуд вначале вливать необходимое количество воды, после чего, помешивая, медленно вливать кислоту;
- при приготовлении раствора щелочей нужно навеску щелочи опустить в сосуд с широким горлом, залить необходимым количеством воды и тщательно перемешать;
