ГОСТ 28566-90 Продукты пищевые. Метод выявления и определения количества энтерококков Стр. 1 из 6.




Группа Н09

М Е Ж ГОСУДАРСТВЕННЫЙ СТАНДАРТ

ПРОДУКТЫ ПИЩЕВЫЕ

М

ГОСТ
28566-90

етод выявления и определения количества энтерококков

Food products. Method for detection and determination of count
Enterococci

МКС 07.100.30

ОКСТУ 9109

Дата введения 01.07.91

Настоящий стандарт распространяется иа пищевые продукты и устанавливает метод выявления и количественного определения энтерококков (Streptococcus faecalis, Streptococcus faecium, Strepto­coccus avium, Streptococcus gallinarum).

Метод основан на высеве определенного количества продукта или его разведении в жидкую селективную среду или на поверхность плотной селективной среды, аэробном культивировании посевов при (37 ± 1) °С в течение 24—48 ч, подтверждении принадлежности выросших микроорга­низмов к энтерококкам, пересчете их количества на 1,0 г (см3) продукта.

  1. ОТБОР И ПОДГОТОВКА ПРОБ

Отбор проб — по ГОСТ 26668, подготовка к испытанию — по ГОСТ 26669.

  1. АППАРАТУРА, МАТЕРИАЛЫ И РЕАКТИВЫ

Для проведения испытан ия применяют аппаратуру, материалы и реактивы по ГОСТ 10444.1 со следующими дополнениями:

весы лабораторные общего назначения с метрологическими характеристиками по ГОСТ 24104*, с наибольшим пределом взвешивания до 200 г и пределом допускаемой погрешнос­ти ± 2 мг (для взвешивания реактивов);

весы лабораторные общего назначения с метрологическими характеристиками по ГОСТ 24104, с наибольшим пределом взвешивания до 1 кг и пределом допускаемой погрешности ± 10 мг (для взвешивания продукта);

микроскоп световой биологический с увеличением в 900—1000 раз;

стерилизатор горячим воздухом;

термостат с диапазоном рабочих температур от 28 °С до 55 °С, позволяющий поддерживать заданную температуру с погрешностью ± 1 °С;

холодильник бытовой;

водорода пероксид по ГОСТ 10929;

.f/l&AzJJ'di. Лэ jr-ImCi.*. kJ J/CXJ. tiJ.Aj.IXj CdKAJ J. d» лййіад/J-tLoj

железо (Ш) — аммония гидроцитрат;

ферментативный гидролизат казеина;

* С 1 июля 2002 г. введен в действие ГОСТ 24104—2001 (здесь и далее).

П

Издание официальное

ерепечатка воспрещена

С. 2 ГОСТ 28566-90

канамицин сульфат во флаконах по 0,5 г — 500 000 ЕД и 1 г — 1 000 000 ЕД, в ампулах по 5 и 10 см3 5 % раствора, содержащих 0,25 и 0,5 г препарата;

полимиксин М сульфат во флаконах по 500 000 ЕД;

эскулин;

натрия гидрокарбонат (NaHCO3) по ГОСТ 4201.

  1. ПОДГОТОВКА К ИСПЫТАНИЮ

    1. Приготовление растворов

      1. Раствор с объемной долей пероксида водорода 10 %:

33,3 см3 пероксида водорода с содержанием основного вещества 30 % (в случае если пероксид водорода имеет другое содержание основного вещества, то делается пересчет) переносят в мерную колбу вместимостью 100 см3, доводят объем дистиллированной водой до метки.

    1. Раствор с массовой долей НС1 5 %:11,5 см концентрированной соляной кислоты пере­носят в мерную колбу вместимостью 100 см3, доводят объем дистиллированной водой до метки.

    2. Раствор массовой концентрацией натрия гидроксида 50 г/дм3: 5 г натрия гидроксида переносят в мерную колбу вместимостью 100 см3, растворяют в дистиллированной воде. Раствор доливают до метки.

    3. Раствор 2-, 3 -, 5 -трифенилтетразолий хлорида (ТТХ) массовой концентрацией 10 г/дм3:1 г ТТХ переносят, смывая дистиллированной водой в мерную колбу вместимостью 100 см3, доводят объем дистиллированной водой до метки. Раствор стерилизуют методом мембранной фильт­рации по ГОСТ 26670. В земной плотно закрытой посуде раствор хранят при (4 ± 2) 6С не более З мес.

    4. Раствор массовой концентрацией теллурита калия 20 г/дм3: 2 г теллурита калия перено­сят, смывая дистиллированной водой в мерную колбу вместимостью 100 см3, доводят объем дистил­лированной водой до метки. Раствор стерилизуют методом мембранной фильтрации по ГОСТ 26670.

    5. Спиртовой раствор массовой концентрацией бромтимолового синего 16 г/дм3: 1,6 г бромтимолового синего переносят в мерную колбу вместимостью 100 см3 и растворяют в этиловом спирте с массовой долей 96 %. Раствор доливают этиловым спиртом до метки.

    6. Раствор массовой концентрацией кристаллического фиолетового 0,1 г/дм3: 0,01 г крис­таллического фиолетового переносят в мерную колбу вместимостью 100 см3 и растворяют в дистил­лированной воде. Раствор доливают до метки.

    7. Спиртовой раствор массовой концентрацией бромкрезолового ПурПурНОГО jg г/дм3: 1,6 г бромкрезолового пурпурного переносят в мерную колбу вместимостью 100 см3 и растворяют в этиловом спирте с массовой долей 96 %. Раствор доливают этиловым спиртом до метки.

    8. Раствор массовой концентрацией натрия азида 100 г/дм3: 10 г натрия азида переносят в мерную колбу вместимостью 100 см3, растворяют при легком подогревании в дистиллированной воде и раствор доливают до метки. Раствор готовят под вытяжкой, так как пары натрия азида ядовиты.

    9. Раствор массовой концентрацией канамицина сульфата 50 г/дм3 (50 000 000 ЕД) и 100 г/дм3 (100 000 000 ЕД): во флаконы с 0,5 г или 1 г препарата вносят 10 см3 стерильной дистил­лированной воды, содержимое флаконов растворяют.

    10. Молоко обезжиренное готовят по ГОСТ 10444.1.

    11. Растворы для окраски по Граму готовят по ГОСТ 10444.1.

  1. Приготовление питательных сред

    1. Азидно-глюкозный бульон

Основа среды: к 1 дм3 мясопептонного бульона, приготовленного по ГОСТ 10444.1, добавляют 5,0 г пептона, 7,5 г глюкозы, 2,5 г натрия хлорида, составные части растворяют нагреванием. После этого охлаждают и устанавливают pH таким образом, чтобы после стерилизации при 25 °С он составлял 7,2 ± 0,1. Затем основу среды стерилизуют текучим паром (при 100 °С) в течение 30 мин. К основе среды, охлажденной до 50 еС, добавляют 2,0 см3 натрия азида, приготовленного по п. 3.1.9, и 2,0 см3 раствора бромкрезолового пурпурного, приготовленного по п. 3,1.8. Готовую среду не стерилизуют. Среду хранят в защищенном от света и высыхания вице при (4 ± 2) вС не более 3 мес. Непосредственно перед использованием ее разливают по 5 см3 в стерильные пробирки.

  1. Глюкозо-триптонный бульон с дрожжевым экстрактом с pH 7,2 и 9,6:5,0 г триптона или ферментативного казеинового гидролизата, 12,5 см3 дрожжевого экстракта, 1,0 г глюкозы добавляют

5

0ГОСТ 28566-90 С. 3

к 1 дм3 дистиллированной воды. Смесь, периодически помешивая, подогревают до полного раство­рения всех составных частей, охлаждают и устанавливают pH таким образом, чтобы после стерили­зации он составлял при 25 °С 7,2 ± 0,1 или 9,6 ± 0,1.

Среду разливают по 5 см3 в пробирки и стерилизуют при температуре (121 ± 1) °С в течение 15 мин. Среду хранят при (4 ± 2) °С не более 14 сут.

  1. Салевой бульон

Основа среды — глюкозо-триптонный бульон с дрожжевым экстрактом с pH 7,2 ±0,1 по п. 3.2.2.

При приготовлении питательной среды в 1 дм3 основы среды растворяют на водяной бане 65,0 г натрия хлорида, разливают по 5 см3 в пробирки, стерилизуют при (121 ± 1) °С в течение 15 мин.

Питательную среду можно готовить за одну операцию, тогда в процессе приготовления основы среды добавляют 65,0 г натрия хлорида. Среду хранят при (4 ± 2) °С не более месяца.

  1. 40 %-ный желчный бульон

Основа среды — глюкозо-триптонный бульон с дрожжевым экстрактом с pH 7,2 ± 0,1. К 600 см3 охлажденной до 45 С—55 °С основы среды добавляют асептически 400 см3 стерильной профильтрованной желчи крупного рогатого скота или эквивалентное количество сухой желчи.

Среду хранят при (4 ± 2) °С не более 3 мес.

  1. Селективный агар по Сланецу и Бертли:

20,0 г пептона, 25,0 см3 дрожжевого экстракта, 2,0 г глюкозы, 4,0 г калия фосфорнокислого двузамещенного, (15,0 ± 3,0) г агара помещают в мерную колбу вместимостью 1000 см3, доливают дистиллированной водой до метки, нагревают до растворения компонентов. Охлаждают, устанавли­вают pH таким образом, чтобы после стерилизации он составлял при 25 °С 7,2 ± 0,1. Стерилизуют текучим паром (при 100 °С) в течение 30 мин, охлаждают до 50 °С. Добавляют 4,0 см3 раствора азида натрия, приготовленного по п. 3.1.9, и 10,0 см3 раствора 2-, 3-, 5-трифенилтетразолий хлорида, приготовленного по п. 3.1.4, хорошо перемешивают и разливают по чашкам Петри. Среду хранят при (4 ± 2) °С не более 7 сут.

  1. Канамицин азидно-эскулиновый агар (КАЭ-агар):

20,0 г пептона из казеина, 25,0 см3 дрожжевого экстракта, 5,0 г натрия хлорида, 1,0 г натрия лимоннокислого, 0,5 г железа (III) — аммония гидроцитрата, 1,0 г эскулина, (15,0 ± 3,0) г агара помещают в мерную колбу вместимостью 1000 см3, доливают дистиллированной водой до метки. Растворяют составные части при нагревании, охлаждают, устанавливают pH таким образом, чтобы после стерилизации при 25 °С он составлял 7,1 ± 0,1. Стерилизуют при (121 ± 1) °С в течение 15 мин, охлаждают до 50 °С, добавляют 1,5 см3 раствора азида натрия, приготовленного по п. 3.1.9, и 0,4 см3 раствора канамицина сульфата массовой концентрацией 50 г/дм3 или 0,2 см3 раствора канамицин сульфата массовой концентрацией 100 г/дм3 и разливают по чашкам Петри. Среду хранят при (4 ± 2) °С не более 7 сут.

  1. Глюкозо-триптонный агар с дрожжевым экстрактом с pH 7,2 ± 0,1 готовят по п. 3.2.2, но при приготовлении добавляют на 1 дм3 среды (15,0 ± 3,0) г агара.

  2. Щелочная полимиксиновая среда:

Основа среды —к 400 см3 мясо-пептонного бульона по ГОСТ 10444.1 добавляют 5 г натрия хлорида, 10 г глюкозы, 10 см3 дрожжевого экстракта. Основу среды стерилизуют при (ПО ± 1) °С в течение 12 мин, охлаждают и добавляют 250 см3 раствора натрия карбоната массовой концентра­цией 21,2 г/дм3 и 250 см3 раствора бикарбоната натрия массовой концентрацией 10 г/дм3. Устанав­ливают pH таким образом, чтобы при 25 °С он составлял 10,1 ± 0,1. После этого к среде добавляют 200 000 ЕД полимиксина М сульфата, 5,0 см3 спиртового раствора бромтимолового синего, приго­товленного по п. 3.1.6. Среду хранят в защищенном от света и высыхания виде при (4 ± 2) °С не более 7 сут. Непосредственно перед использованием среду разливают по 5 см3 в стерильные про­бирки.

  1. Молочно-ингибиторная среда (МИС):

К 850 см3 расплавленного и охлажденного до 50 °С мясо-пептонного агара, приготовленного по ГОСТ 10444.1, добавляют 150 см3 обезжиренного молока, приготовленного по ГОСТ 10444.1, 12,5 см3 раствора кристаллического фиолетового, приготовленного по п. 3.1.7, 10,0 см3 раствора калия теллурита, массовой концентрацией 20 г/дм3, 200 000 ЕД полимиксина М сульфата. Среду не

51

С. 4 ГОСТ 28566-90

стерилизуют, разливают в стерильные чашки Петри и хранят при (4 + 2) °С не более 10 сут. Допус­кается взамен раствора калия теллурита добавлять в среду 5,0 см3 раствора 2-, 3-, 5-трифенилтетра- золий хлорида, приготовленного по п. 3.1.4.

  1. ПРОВЕДЕНИЕ ИСПЫТАНИЯ

    1. Из навески продукта готовят исходное и ряд десятикратных разведений по ГОСТ 26669 так, чтобы можно было определить ожидаемое количество энтерококков в 1,0 г (см3) продукта или определить допустимое количество энтерококков, указанное в нормативно-технической документа­ции на конкретный вид пищевого продукта.

При выявлении энтерококков из навески продукта готовят исходное и ряд десятикратных разведений так, чтобы можно было определить минимальное количество продукта, содержащее энтерококки, или высевают навеску продукта, которая указана в нормативно-технической докумен­тации на этот продукт.

  1. Для определения количества энтерококков 0,1 или 0,2 см3 продукта или его разведения высевают по ГОСТ 26670 на поверхность предварительно подсушенной агаризованной питательной среды, приготовленной по п. 3.2.5 или 3.2.6, или 3.2.9.

  2. Если необходимо выявить энтерококки в навеске продукта определенной массы или объема, то навеску продукта или его разведение высевают непосредственно в жидкую питательную среду по п. 3.2.1 или 3.2.8.

  3. Посевы инкубируют при (37 ± 1) °С в течение 24—48 ч, через 24 ч проводят предваритель­ный учет результатов, через 48 ч — окончательный.

  4. После инкубирования посевов, проведенных по п. 4.3, учитывают пробирки с признаками роста микроорганизмов: помутнением среды и изменением ее окраски в желтый цвет. Из пробирок с признаками роста, предположительно энтерококков, делают пересевы на поверхность агаризован­ной среды п. 3.2.5 или 3.2.6, или 3.2.9 таким образом, чтобы получить рост изолированных колоний, посевы на этих средах инкубируют при (37 ± 1) °С в течение 24—48 ч.

  5. После инкубирования посевов, проведенных по п. 4.2, учитывают чашки Петри, на кото­рых выросло от 15 до 150 характерных для энтерококков колоний:

  1. питательной среде по п. 3.2.5 колонии энтерококков красно-розовые или карминовые с коричневым оттенком диаметром до 2 мм;

  2. питательной среде по п. 3.2.6 колонии энтерококков оливково-зеленые до темно-коричне­во-черных с равномерной окраской поля;

на питательной среде по п. 3.2.9:

  1. с 2-, 3-, 5-ТТХ—колонии вишнево-красные с зоной протеолиза или бесцветные с розовым центром;

  2. с теллуритом калия — колонии окрашены в черный цвет.

  1. Посевы по п. 4.5 через 24—48 ч инкубирования просматривают и отмечают рост колоний, характерных для энтерококков по п. 4.6.

  2. Для дальнейшего подтверждения принадлежности характерных колоний к энтерококкам отбирают не менее пяти колоний из посевов по пп. 4.6 и 4.7 и пересевают их на чашки Петри с агаризованной средой по п. 3.2.7 таким образом, чтобы получить рост изолированных колоний. Посевы инкубируют при (37 ± 1) °С в течение 24—48 ч.