ГОСТ 11293-89 сторінка 4 з 5
-
Подготовка к анализу
-
Подготовка и стерилизация посуды и материалов
-
Вся посуда для бактериологического анализа перед стерилизацией должна быть тщательно вымыта и высушена. Пробирки должны быть закрыты ватными пробками и завернуты в бумагу; горлышки колб и флаконов закрывают ватной пробкой, а сверху — бумажным колпачком, который обвязывают ниткой.
Пробки для пробирок и колб готовят из ваты, обертывают слоем марли и завязывают ниткой на свободном конце.
Чашки Петри укладывают в металлические пеналы или завертывают в бумагу.
В конец пипетки, который берется в рот, вкладывают кусочек ваты. Пипетки помещают в металлические пеналы от 6 до 10 шт. в каждый или завертывают в бумагу.
Подготовленную посуду стерилизуют сухим паром в течение 2 ч в сушильном шкафу при (160+5) "С. При отсутствии сушильною шкафа посуду стерилизуют в течение 30 мин в автоклаве при (126±2) °С.
Стерильную посуду вынимают из сушильного шкафа после его охлаждения ниже 60 °С и хранят в плотно закрытых шкафах или ящиках лабораторных столов.
-
П р и г о т о в л е н и е м я с н о й воды
Говяжье или конское мясо освобождают от костей, жира и сухожилий, измельчают на мясорубке и заливают холодной водой из расчета 1000 см3 воды на 500 г мяса. Смесь воды с измельченным мясом медленно нагревают до кипения и кипятят в течение 1,5 ч. Небольшое количество смеси (до 5 дм3) допускается кипятить на открытом огне при частом помешивании во избежание пригорания частичек мяса. Большое количество смеси следует кипятить в котлах с паровой рубашкой. Для определения готовности мясной воды сначала фильтруют небольшое количество смеси в пробирку через бумажный фильтр. Если жидкость прозрачная — вода готова.
Затем жидкость и весь сок из вареного мяса отжимают через ткань, доводят кипяченой водой до объема 1000 см3, разливают в чистую посуду (колбы, бутыли) и стерилизуют в течение 20 мин в автоклаве при (120,0±0,5) °С.
-
Приготовление мясопептонного агара
К 1000 см3 мясной воды, приготовленной по п. 4.24.2.2, добавляют 10 г сухого пептона и 5 г хлористого натрия, кипятят в течение 30 мин, после этого уровень доводят кипяченой водой до первоначального объема и фильтруют через бумажный фильтр. Затем среду нейтрализуют насыщенным раствором двууглекислого натрия или раствором с массовой долей гидроокиси натрия 10 %, устанавливая 7,0—7,2 ед. pH и стерилизуют при (120,0±0,5) °С в течение 15— 20 мин. Если после стерилизации в мясопептонном бульоне выпадает осадок, его фильтруют вторично и снова стерилизуют при том же режиме стерилизации.
К 1000 см3 приготовленного мясопептонного бульона перед стерилизацией добавляют 20 г агара и кипятят на слабом огне при постоянном помешивании до полного растворения.
-
Приготовление мясопептонного агара
К 1000 см3 мясопептонного бульона, приготовленного по п. 4.24.2.3, перед стерилизацией добавляют 20 г агара и кипятят на слабом огне при постоянном помешивании до полного растворения. Мясопептонный агар, охлажденный до 50—55 °С, осветляют яичным белком (из расчета один белок на 1000 см3 мясопептонного агара), помещают в автоклав, не завинчивая крышку автоклава, или в аппарат Коха на 1 ч, чтобы белок свернулся и, оседая, увлек за собой взвешенные частицы.
Горячий мясопептонный агар фильтруют через ватно-марлевый фильтр и устанавливают 7,0—7,4 ед. pH. Разливают во флаконы и пробирки и в течение 20 мин стерилизуют в автоклаве при (120,0±0,5) °С.
-
Приготовление плотного питательного а г а р а
К 100 см3 дистиллированной воды добавляют 5 г порошка агара, тщательно размешивают и кипятят на слабом огне до полного расплавления агара в закрытой посуде при периодическом помешивании во избежание пригорания, фильтруют, разливают в пробирки или флаконы и в течение 20 мин стерилизуют при (12О,О±О,5) °С.
-
Приготовление карболового раствора генциана фиолетового и кристаллического фиолетового
1 г генциана фиолетового или кристаллвиолета растирают в ступке с 5 г кристаллической карболовой кислоты до кашицы, прибавляют небольшими порциями 10 см3 этилового спирта. После того, как краска полностью разотрется, прибавляют при постоянном помешивании 100 см3 дистиллированной воды. Сливают в колбу, оставляют на сутки, затем фильтруют.
-
Приготовление раствора Люголя
2 г йодистого калия растворяют в 10 см3 дистиллированной воды. Затем 1 г кристаллического йода растирают в мелкий порошок, при помешивании добавляют раствор йодистого калия. Когда полностью растворится йод, добавляют дистиллированной воды до 300 см3.
-
Приготовление ф у к с и н - н а с ы щ е н н о г о
спиртового раствора
8—9 г основного фуксина высыпают во флакон, заливают 100 см3 этилового спирта и ставят на 18—24 ч в термостат с температурой (37±1) °С, флакон периодически взбалтывают. В течение указанного времени значительная часть красителя растворяется, и на дне флакона остается осадок, свидетельствующий о насыщении раствора.
Насыщенный раствор хранят во флаконах из темного стекла.
Из насыщенного спиртового раствора готовят фуксинспиртовод- ный раствор. Для этого к 1 см3 насыщенного спиртового раствора прибавляют 9 см3 дистиллированной воды.
-
Приготовление физиологического раствора
8,5 г хлористого натрия растворяют в 1000 см3 питьевой воды. Стерилизуют при (120,0±0,5) °С в течение 20 мин.
-
Приготовление среды Хейфеца (модифицированная)
Среду готовят непосредственно в лаборатории следующим образом. В колбу вместимостью 1000 см3 вносят 10 г пептона, 5 г лактозы, 5 г хлористого натрия, 1 см3 спиртового раствора с массовой долей розоловой кислоты 5 % и 2,5 см3 раствора.с массовой долей метиленового синего 0,1 %, заливают 1000 см3 питьевой воды и нагревают до кипения.
Среду разливают в пробирки с поплавками по 10 см3 и стерилизуют в течение 15 мин в автоклаве при (110±2)°С или в течение 20 мин в аппарате Коха или в кипящей водяной бане.
Среда должна быть нейтральной в пределах 7,4—7,6 ед. pH. При использовании новой партии пептона в первом приготовлении среды до добавления красителя устанавливают объем щелочи, который необходимо добавить для достижения 7,4—7,6 ед. pH, используя раствор гидроокиси натрия концентрации 0,1 моль/дм3. При последующих приготовлениях ориентируются лишь на цвет среды, для чего рекомендуется при первом приготовлении отбирать и хранить образец-эталон цвета.
Примечание. Для нейтрализации 1 г семипалатинского пептона требуется от 0,5 до 0,8 см3 раствора гидроокиси натрия с концентрацией 0,1 моль/дм3.
-
Растворы красителей готовят следующим образом
Порошок розоловой кислоты массой 0,5 г насыпают в маленький флакончик с притертой пробкой или резиновой пробкой и заливают 10 см3 этилового спирта. Раствором можно пользоваться на следующие сутки в течение месяца.
0,1 г метиленовой сини заливают 100 см3 дистиллированной воды, затем выдерживают сутки в термостате при температуре 37—40 °С. Срок пользования раствором не ограничен.
Для каждого из индикаторов нужно иметь отдельную пипетку, продетую через пробку, которой закрыт пустой флакон. После отмеривания раствора пипетку не моют и выставляют обратно в пустой флакон.
-
Приготовление основного раствора желатина
20 г желатина, взятого из средней пробы, помещают в колбу и заливают 180 см3 стерильной питьевой воды или физиологического раствора, затем оставляют набухать при 5—10 °С в течение 1,0—1,5 ч. Колбу с набухшим желатином помещают в водяную баню, нагретую до (40±2) °С, выдерживают в ней до полного растворения желатина. Затем в колбу помещают стерильный магнит и ставят на магнитную мешалку, нагретую до (38±2) °С, и перемешивают в течение 5— 10 мин. Магнит стерилизуют кипячением в колбе в течение 15— 20 мин.
10 см3 приготовленного раствора содержат 1 г желатина (разведение 10-1).
-
Приготовление десятикратных разведений
Для проведения бактериологических анализов готовят следующие разведения.
Разведение 1 : 100 или 10-2. Стерильной пипеткой набирают 1 см3 основного раствора, приготовленного по п. 4.24.2.12 (разведение 10“1), и вносят в пробирку с 9 см3 стерильной питьевой воды или физиологического раствора.
Разведение 1 : 1000 или 10-3. Второй стерильной пипеткой тщательно перемешивают содержимое пробирки с разведением 10~2, набирая в пипетку раствор и выдувая его, повторяя эту процедуру 8—10 раз. Затем 1 см3 полученного раствора отбирают этой же пипеткой и переносят в следующую пробирку с 9 см3 воды.
Воду или физиологический раствор, используемые для разведений, подогревают до 36—40 °С.
-
Методы анализа
-
Определение количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов
-
Метод основан на способности определяемых микроорганизмов размножаться на плотном питательном агаре при (30±1) °С в течение (72±3) ч.
-
Проведение анализа.
По 1 см3 раствора желатина вносят параллельно в две стерильные чашки Петри из каждого приготовленного разведения. Если анализируемый материал начинают засевать с первого разведения, то для каждого разведения используют новую пипетку, а если начинают засевать с последнего разведения, то используют одну пипетку. Затем в чашки Петри с анализируемым материалом заливают по 15 см3 расплавленного и охлажденного до 45—50 °С мясопептонного агара. Содержимое чашек тщательно перемешивают вращательными движениями, после застывания агара их помещают (вверх дном) в термостат при (30±1) °С в течение (72±3) ч.
-
Обработка результатов.
Для подсчета колоний выбирают чашки Петри с изолированными колониями.
Подсчет общего количества КОЕ в 1 г желатина производят в одной чашке Петри (Х5) по формуле
Х5= п • 10
где п — количество колоний, подсчитанное в чашке Петри;
Л| — степень разведения.
За окончательный результат анализа принимают среднее арифметическое значение двух результатов подсчета одного разведения.
-
Определение наличия бактерий группы кишечных палочек (колиформных)
Метод основан на способности бактерий группы кишечных палочек (колиформных) в среде Хейфеца расщеплять лактозу, вследствие чего выделяются газы и образуются кислые продукты, изменяющие цвет индикатора.
-
Проведение анализа.
Из приготовленных выше разведений берут по 1 см3 раствора и засевают в две пробирки, содержащие по 5 см3 среды Хейфеца. Посевы термостатируют при (37,0±0,5) °С в течение 13—16 ч.
Колиформные бактерии вызывают помутнение среды, изменение ее окраски из красно-фиолетовой на желтую и образование газа в поплавках. При остывании среда приобретает зеленоватый оттенок.
Когда цвет недостаточно яркий или мутность слабая, или газообразование слабо выражено, из пробирки рекомендуется отлить 1— 2 см3 среды в белую фарфоровую чашку и добавить одну-две капли индикатора метилового красного (0,1 г метилового красного, 62 см3 спирта и 38 см3 дистиллированной воды).
Появление устойчивой малиновой или кирпично-красной окраски через 1—2 мин указывает на наличие колиформных бактерий.
-
Обработка результатов.
При отсутствии колиформных бактерий в разведении 10-2 желатин соответствует требованиям стандарта.
-
Определение наличия бактерий группы кишечных палочек (колиформных) на средах Кода и Кесслер — по ГОСТ 23058.
-
Определение наличия патогенных микроорганизмов
Определение наличия патогенных микроорганизмов проводят по методам, утвержденным Министерством здравоохранения СССР.
-
Определение количества желатинраз- жижающих бактерий в 1 г желатина
Сущность метода заключается в специфическом росте желатин- разжижаюших бактерий на желатине, которые продуцируют и выделяют в среду протеолитический фермент — желатиназу, расщепляющий белок желатина, вследствие чего отмечается его разжижение.
-
Проведение анализа.
По 10 см3 раствора желатина, приготовленного по п. 4.24.2.12, вносят в две чашки Петри. Желатин распределяют по дну чашки легкими вращательными движениями и выдерживают в термостате при (24±1) °С в течение 48 ч. Колонии желатинразжижающих бактерий имеют вид маленьких прозрачных пузырьков за счет разжижения желатина. При выдерживании чашек с желатином более четырех суток колонии увеличиваются. При наклоне чашки на месте колонии желатин сползает.
-
Обработка результатов.
Обнаруженные на желатине колонии желатинразжижающих бактерий подсчитывают в каждой чашке Петри.
За окончательный результат анализа принимают среднее арифметическое значение двух результатов подсчета.
-
-
При проведении испытаний допускается применение реактивов, аппаратуры и лабораторной посуды, с характеристиками не ниже указанных.
-
-
ТРАНСПОРТИРОВАНИЕ И ХРАНЕНИЕ
-
Транспортирование
-
Желатин транспортируют всеми видами транспорта в крытых транспортных средствах в соответствии с правилами перевозок грузов, действующими на данном виде транспорта.
Побачили розбіжність з офіційним текстом?
Дивіться також
Сборник ГОСТ ЕСКД
Збірник із 154 стандартів